石臘切片樹脂切片

『壹』 什麼是stl文件的切片技術

根據切片的厚度分為：半薄切片和超薄切片。
半薄切片主要有冰凍切片、石蠟切片和樹脂切片，用於在光鏡和熒光顯微鏡下觀察；
超薄切片主要就是樣品用包埋液包埋聚合後進行切片，得到70-100nm厚度的片子，用於透射電鏡下觀察，可以檢測細胞內的超微結構。

『貳』 比較動物,植物和脂類三種石蠟切片製作過程的異同

我就是做切片的，相同的是步驟都要經過包埋，染色，洗脫等的步驟
但是不同的是組織的不同，處理的時間不同。至於具體的時間還是要查具體的文獻吧，我們是醫院做病理的

『叄』 如何製作石蠟切片

1. 取材：切取一小段需要的組織，組織塊的規格為 3-5mm×3-5mm×10-15mm。
2. 固定：固定液用量一般為組織塊體積的10-20倍。
3. 沖洗：固定12-24小時後，將材料自固定液中取出後，在70%酒精中換洗幾次，可在酒精中加幾滴氨水至洗去黃色為止。
4. 脫水：70%酒精→80%酒精→90%酒精→95%酒精→無水乙醇Ⅰ（→無水乙醇Ⅱ
5. 透明：無水乙醇與二甲苯溶液（1:1）→二甲苯Ⅰ→二甲苯Ⅱ
6.浸蠟：浸蠟的全過程應在恆溫設備中進行，將恆溫箱調至58℃。
二甲苯與石蠟混合液（1:1）→石蠟Ⅰ→石蠟Ⅱ浸蠟必須徹底，否則組織內殘留透明劑會造成切片過程的困難和影響切片的質量。
7. 包埋：在盒內注入溶化的石蠟，將已浸蠟的組織塊置入其內，使蠟塊迅速冷卻硬固，組織塊在蠟塊中可長期保存。
8. 切片：包埋後的組織塊經修正後，用切片機切成5-7μm的石蠟帶。
9. 粘片：將組織石蠟帶在50攝氏度的溫水中展片，然後用經1%氯化氫溶液處理干凈的載玻片撈片，組織帶即可粘在載玻片上。
10. 烤片：將粘好的載玻片置於35℃左右的溫箱中烤乾，待2-3小時。
11. 蘇木精—伊紅染色：將烤乾的片進行染色。

『肆』 實驗課上切片、塗片、滴片各有什麼特點

切片：從生物體上切取的薄片製成。如，葉片橫切。

塗片：液體的生物材料塗抹製成。如，血細胞塗片。

裝片：從生物體上撕下或者挑取少量的材料製成。如，洋蔥表皮臨時裝片。

切片應稱做組織切片，或病理切片。將手術取下來的病理組織或可疑的組織經過固定，封臘，經過切片機切成組織薄片，然後固定在玻片面性上，進行染色，這就是切片。最後將切片放在顯微鏡下檢查，根據其病理細胞的特徵，進行病理學的組織定性。

(4)石臘切片樹脂切片擴展閱讀：

切片：供光學顯微鏡或電子顯微鏡觀察的動植物組織薄片。因要求不同，可用刀片進行徒手切片，也可將組織塊包埋於石蠟或火棉膠中或以低溫冰凍，用切片機切片。切成5～10微米薄片，供光學顯微鏡觀察。用環氧樹脂或甲基丙烯酸包埋組織塊切制的超薄切片，其厚度在20～50納米，專供在電子顯微鏡下觀察。一般教學用的如根尖、莖的切片通稱石蠟切片。

『伍』 石蠟切片的優缺點

石蠟切片的優點，能得到比較薄的連續切片。。缺點，操作比較繁瑣，時間比較長。。

『陸』 快速石蠟切片和常規切片的區別是什麼

簡單的說,石蠟切片是標本要這固定後經脫水,浸蠟後才能用於切片,冷凍切片是直接把標本放在切片機上使它即刻冰凍,就可以切片了.再簡單的說一種是要經過很多工序才能用於切片,一種是直接用於切片.

『柒』 石蠟切片製作過程有哪些步驟

石蠟切片的製作過程的步驟包括：
取材，固定，脫水，透明，透蠟，包埋，切片，貼片，染色，透明，封藏等步驟。
具體是：
1．取材
材料的好壞直接影響到切片的質量，無論取哪一種動植物材料，以下幾點是必須注意的。
（1）植物材料選擇時須盡可能不損傷植物體或所需要的部分；動物材料取用時常對動物施以麻醉，常用的麻醉劑有氯仿和乙醚，或將動物殺死後迅速取出所需要的組織。
（2）取材必須新鮮，這一點對於從事細胞生物學研究尤為重要，應該盡可能割取生活著的組織塊，並隨即投入固定液。
（3）切取材料時刀要銳利，避免因擠壓細胞使其受到損傷。
（4）切取的材料應該小而薄，便於固定劑迅速滲入內部。一般厚度不超過2mm，大小不超過5×5mm2。
2．固定
組織和細胞離開機體後，在一定時間內仍然延續著生命活動，會引起病理變化直至歸於死亡。為了使標本能反映它生前的正常狀態，必須盡早地用某些化學葯品迅速地殺死組織和細胞，阻抑上述變化，並將結構成分轉化為不溶性物質，防止某些結構的溶化和消失。這種處理就是固定。除了上述作用外，固定劑會使組織適當硬化以便於隨後的處理，還會改變細胞內部的折射系數並使某些部分易於染色。
固定劑的作用對象主要是蛋白質，至於其他成分如脂肪和糖，在一般製作時不加考慮，如要觀察這些物質，可用特殊的方法將其固定下來。
3．脫水

生物組織中含有大量的水分，它和石蠟是不能相溶的，致使在包埋時石蠟無法滲入組織內部，因此須使用脫水劑將水分除盡，這就是脫水的作用。
脫水劑必須能與水以任何比例相混合。脫水劑有兩類：一類是非石蠟溶劑，如乙醇、丙酮等，脫水後必須再經過透明，才能透蠟包埋；另一類是兼石蠟溶劑，如正丁醇，脫水後即可直接透蠟。
常用的脫水劑是乙醇，因為它價格便宜，易於得到。
4．透明
組織塊用非石蠟溶劑脫水後必須經過透明。透明劑能同時與脫水劑和石蠟混合，它取代了脫水劑後，石蠟便能順利地滲入組織。
透明劑的種類很多，較常用的是二甲苯、甲苯、苯、氯仿、香柏油和苯胺油等。
5．透蠟和包埋

透蠟須在恆溫箱中進行，恆溫箱的溫度調節至高於石蠟熔點3度，使經過透明的組織塊依次用石蠟與二甲苯的等量混合液、純石蠟處理。純石蠟應處理2～3次，透蠟的時間依材料性質而定，一般每次需15～30min。

透明的關鍵是控制溫度的恆定，切忌忽高忽低，溫度過低石蠟凝固無法滲透，溫度過高使組織收縮發脆。
包埋是使浸透蠟的組織塊包裹在石蠟中。具體做法是；先准備好紙盒（具體折法見圖1-3及說明），將熔蠟倒入盒內，迅速用預溫的鑷子夾取組織塊平放在紙盒底部，切面朝下，再輕輕提起紙盒，平放在冷水中，待表面石蠟凝固後立即將紙盒按入水中，使其迅速冷卻凝固，30min後取出。
包埋用蠟的溫度應略高於透蠟溫度，保證組織塊與周圍石蠟完全融為一體。石蠟的迅速冷卻也很重要，否則包埋塊中將會產生結晶。以後切片時引起碎裂。
6．切片
切片前，將刀口置放大鏡下觀察，選擇刀口平整無缺刻的部分來進行切削。將所要切的包埋塊固定在標本台上，使包埋塊外切面與標本夾截面平行，並讓包埋塊稍露出一截。將刀台推至外緣後松開刀片夾的螺旋，上好刀片，使切片刀平面與組織切面間呈15°左右的夾角，包埋塊上下邊與刀口平行。在微動裝置上調節切片要求的厚度，調節時應注意指針不可在兩個刻度之間，否則容易損傷切片機，將刀台移至近標本台處，讓刀口與組織切面稍稍接觸，這時就可以開始切片了。方法是：右手轉動轉輪，左手持毛筆在刀口稍下端接隹切好的片子，並托住切下的蠟帶，待蠟帶形成一定長度後，右手停止轉動，持另一枝毛筆輕輕將蠟帶挑起，平放於襯有黑紙的紙盒內，注意切片速度不宜太快，搖動轉輪用力應均勻，防止切片機震動厲害引起切片厚薄不均勻，還應注意轉動的方向，以防標本台後移而切不到片子。切片完畢，應及時用氯仿將切片機的有關部分擦凈。

『捌』 石蠟切片技術和超薄切片技術有什麼區別

石蠟切片（paraffin section） 組織學常規製片技術中最為廣泛應用的方法。石蠟切片不僅用於觀察正常細胞組織的形態結構，也是病理學和法醫學等學科用以研究、觀察及判斷細胞組織的形態變化的主要方法，而且也已相當廣泛地用於其他許多學科領域的研究中。教學中，光鏡下觀察切片標本多數是石蠟切片法制備的。活的細胞或組織多為無色透明，各種組織間和細胞內各種結構之間均缺乏反差，在一般光鏡下不易清楚區別出；組織離開機體後很快就會死亡和產生組織腐敗，失去原有正常結構，因此，組織要經固定、石蠟包埋、切片及染色等步驟以免細胞組織死亡，而能清晰辨認其形態結構。

超薄切片技術由於電鏡產生的電子束穿透能力很弱，必須把標本切成厚度小於0.1um以下的薄片才適用，這種薄片稱為超薄切片。常用的超薄切片厚度是50-70nm。在透射電鏡的樣品制備方法中，超薄切片技術是最基本、最常用的制備技術。超薄切片的製作過程基本上和石蠟切片相似，需要經過取材、固定、脫水、浸透、包埋聚合、切片及染色等步驟。

『玖』 什麼樣的切片是好的切片

好的切片應該是薄且比較透明、組織結構完整，否則要重新進行切片。

連續地切下數片後，將刀片放在培養皿的水中稍一晃動，切片即漂浮於水中。當切到一定數量後，可在培養皿內挑選透明的薄片用低倍鏡觀察檢查。

對經檢查符合要求的切片，如果只作臨時觀察，可封藏在水中進行觀察。若要更清楚地顯示其組織和細胞結構，可選擇一些切片進一步通過固定、染色、脫水、透明及封藏等步驟，做成永久玻片標本。

生物或醫學的切片

切片是玻片標本的一種，供光學顯微鏡或電子顯微鏡觀察的動植物組織薄片。因要求不同，可用刀片進行徒手切片，也可將組織塊包埋於石蠟或火棉膠中或以低溫冰凍，用切片機切片。切成5～10微米薄片，供光學顯微鏡觀察。

用環氧樹脂或甲基丙烯酸包埋組織塊切制的超薄切片，其厚度在20～50納米，專供在電子顯微鏡下觀察。一般教學用的如根尖、莖的切片通稱石蠟切片。

切片：是在切片機上進行。切片的厚度因需要而定，一般在5～7微米（μm）左右。

製作切片時應迅速前後多次切割，且每次切割後必須用刀片浸一下水，從中挑選最薄的一片，以便觀察。

以上內容參考：網路-切片

『拾』 聚酯切片 石蠟 不同

纖維級聚酯切片分為半消光、有光、超有光、陽離子四種，其外觀標准為：半消光聚酯切片為乳白色或呈灰色顆粒，有光切片為半透明顆粒，超有光切片為無色透明顆粒，陽離子切片為透明（微黃）顆粒，顆粒均勻。非纖級為超有光無色透明顆粒。

纖維級聚酯切片可用於紡制POY、FDY，也可紡制棉型、中長、毛型短纖、中空纖維和差別化纖維；

膜級聚酯切片可用於生產聚酯薄膜、聚酯包裝物等。

瓶級聚酯切片共有三條瓶片生產線，總產能17萬噸/年，可用於碳酸飲料瓶、礦泉水瓶、熱罐裝瓶等。

石蠟切片製作基本技術 石蠟切片法包括取材、固定、洗滌和脫水、透明、浸蠟、包埋、切片與粘片、脫蠟、染色、脫水、透明、封片等步驟。一般的組織從取材固定到封片製成玻片標本需要數日，但標本可以長期保存使用，為永久性顯微玻片標本。

1.取材 應根據要求選取材料來源及部位。例如植物細胞有絲分裂多選取洋蔥根尖，細胞分裂快又便於切取；豬的肝小葉邊界清晰明確；耳蝸以豚鼠的內耳易於定位和剝離。材料必須新鮮，擱置時間過久則產生蛋白質分解變性，導致細胞自溶及細菌的滋生，而不能反映組織活體時的形態結構。

2.固定 用適當的化學葯液——固定液浸漬切成小塊的新鮮材料，迅速凝固或沉澱細胞和組織中的物質成分、終止細胞的一切代謝過程、防止細胞自溶或組織變化，盡可能保持其活體時的結構。固定能使組織硬化，有利於切片的進行，而且也有媒浸作用，有利於組織著色。固定液的種類很多，其對組織的硬化收縮程度以及組織內蛋白質、脂肪、糖類等物質的作用各不相同。例如純酒精可固定肝糖而能溶解脂肪，甲醛能固定一般組織，但溶解肝糖和色素。固定液可分為單一固定液及混合固定液。前者有甲醛（蟻醛、福爾馬林）、酒精、醋酸或冰醋酸、升汞、鋨酸（四氧化鋨）、重鉻酸鉀及苦味酸等，單一固定液不能固定細胞中的所有成分；混合固定液可以互補不足，常用的混合固定液有Bouin氏液、Zenker氏液、FAA液、Carnoy氏液、SuSa液（配方見有關技術書籍）。因此，應根據所要顯示的內容來選擇適宜的固定液。10％福爾馬林（4％甲醛）或10％磷酸緩沖福爾馬林是病理切片常規使用的固定液，不僅適用於常規HE（蘇木精-伊紅）染色，還可以用於組織學有關的其他技術的切片染色。固定液的用量通常為材料塊的20倍左右，固定時間則根據材料塊的大小及松密程度以及固定液的穿透速度而定，可以從1小時至數天，通常為數小時至24小時。

3.洗滌與脫水 固定後的組織材料需除去留在組織內的固定液及其結晶沉澱，否則會影響以後的染色效果。多數用流水沖洗；使用含有苦味酸的固定液固定的則需用酒精多次浸洗；如果組織經酒精或酒精混合液固定，則不必洗滌，可直接進行脫水。固定後或洗滌後的組織內充滿水分，如不除去水分就無法進行以後的透明、浸蠟與包埋，因為透明劑多數是苯類，苯類和石蠟均不能與水相融合，水分不脫盡，苯類不能浸入。酒精為常用脫水劑，它既能與水相混合，又能與透明劑相混，為了減少組織材料的急劇收縮，應使用從低濃度到高濃度遞增的順序進行，通常從30％或50％酒精開始，經70％、85％、95％直至純酒精（無水乙醇），每次時間為1～數小時，如不能及時進行各級脫水，材料可以放在70％酒精中保存，因高濃度酒精易使組織收縮硬化，不宜處理過久。正丁醇、叔丁醇、丙酮及二氧陸環等也可做脫水劑。

4.透明 純酒精不能與石蠟相溶，還需用能與酒精和石蠟相溶的媒浸液，替換出組織內的酒精。材料塊在這類媒浸液中浸漬，出現透明狀態，此液即稱透明劑，透明劑浸漬過程稱透明。常用的透明劑有二甲苯、苯、氯仿、正丁醇等，各種透明劑均是石蠟的溶劑。通常組織先經純酒精和透明劑各半的混合液浸漬1～2小時，再轉入純透明劑中浸漬。透明劑的浸漬時間則要根據組織材料塊大小及屬於囊腔抑或實質器官而定。如果透明時間過短，則透明不徹底，石蠟難於浸入組織；透明時間過長，則組織硬化變脆，就不易切出完整切片，最長為數小時。

5.浸蠟與包埋 用石蠟取代透明劑，使石蠟浸入組織而起支持作用。通常先把組織材料塊放在熔化的石蠟和二甲苯的等量混合液浸漬1～2小時，再先後移入2個熔化的石蠟液中浸漬3小時左右，浸蠟應在高於石蠟熔點3℃左右的溫箱中進行，以利石蠟浸入組織內。浸蠟後的組織材料塊放在裝有蠟液的容器中（擺好在蠟中的位置），待蠟液表層凝固即迅速放入冷水中冷卻，即做成含有組織塊的蠟塊。容器可用光亮且厚的紙折疊成紙盒或金屬包埋框盒。如果包埋的組織塊數量多，應進行編號，以免差錯。石蠟熔化後應在蠟箱內過濾後使用，以免因含雜質而影響切片質量，且可能損傷切片刀。通常石蠟採用熔點為56～58℃或60～62℃兩種，可根據季節及操作環境溫度來選用。

6.切片 包埋好的蠟塊用刀片修成規整的方形或長方形，以少許熱蠟液將其底部迅速貼附於小木塊上，夾在輪轉式切片機的蠟塊鉗內，使蠟塊切面與切片刀刃平行，旋緊。切片刀的銳利與否、蠟塊硬度適當都直接影響切片質量，可用熱水或冷水等方法適當改變蠟塊硬度。通常切片厚度為4～7微米，切出一片接一片的蠟帶，用毛筆輕托輕放在紙上。

7.貼片與烤片 用粘附劑將展平的蠟片牢附於載玻片上，以免在以後的脫蠟、水化及染色等步驟中二者滑脫開。粘附劑是蛋白甘油。首先在潔凈的載玻片上塗抹薄層蛋白甘油，再將一定長度蠟帶（連續切片）或用刀片斷開成單個蠟片於溫水（45℃左右）中展平後，撈至玻片上鋪正，或直接滴兩滴蒸餾水於載玻片上，再把蠟片放於水滴上，略加溫使蠟片鋪展，最後用濾紙吸除多餘水分，將載玻片放入45℃溫箱中乾燥，也可在37℃溫箱中乾燥，但需適當延長時間。

8.切片脫蠟及水化 乾燥後的切片需脫蠟及水化才能在水溶性染液中進行染色。用二甲苯脫蠟，再逐級經純酒精及梯度酒精直至蒸餾水。如果染料配製於酒精中，則將切片移至與酒精近似濃度時，即可染色。

9.染色 染色的目的是使細胞組織內的不同結構呈現不同的顏色以便於觀察。未經染色的細胞組織其折光率相似，不易辨認。經染色可顯示細胞內不同的細胞器及內含物以及不同類型的細胞組織。染色劑種類繁多，應根據觀察要求及研究內容採用不同的染色劑及染色方法，還要注意選用適宜的固定劑才能取得滿意的結果。經典的蘇木精（Hematoxylin）和伊紅（曙紅，Eosin）染色法是組織學標本及病理切片標本的常規染色，簡稱HE染色。經HE染色後，細胞核被蘇木精染成紫藍色，多數細胞質及非細胞成分被伊紅染成粉紅色。由於蘇木精是帶陽離子的染料，染液呈鹼性，核內染色質及胞質內核糖體等物質對這種染料有親和性，稱嗜鹼性；而帶陰離子的染料伊紅配製的染液呈酸性，對這種染料的親和性，稱嗜酸性。有時不同的組織結構還需要用特殊的染料及染色方法加以顯示，稱特殊染色。有些細胞組織經硝酸銀浸潤後，可使溶液中銀離子還原成金屬銀或銀粒附著在細胞組織上，呈棕黑色，這種性質稱親銀性，而有些細胞組織本身不能使硝酸銀的銀離子還原成金屬銀，還需加還原劑才能將銀離子還原，稱嗜銀性。

10.切片脫水、透明和封片 染色後的切片尚不能在顯微鏡下觀察，需經梯度酒精脫水，在95％及純酒精中的時間可適當加長以保證脫水徹底；如染液為酒精配製，則應縮短在酒精中的時間，以免脫色。二甲苯透明後，迅速擦去材料周圍多餘液體，滴加適量（1～2滴）中性樹膠，再將潔凈蓋玻片傾斜放下，以免出現氣泡，封片後即製成永久性玻片標本，在光鏡下可長期反復觀察。注意有些染料需特定廠家生產的產品。根據各種染色方法、組織類別及切片厚度，掌握適宜的染色時間，才能達到較好的染色效果。

石蠟製片程序及環節繁多，需數日才能完成1個周期，但切片可長期保存，供教學、科研及病理診斷及復察，並可利用蠟塊作其他項目的回顧性研究。病理常規製片過程中已簡化了一些細的環節或縮短了部分處理時間以適應臨床需要（可縮短至2天）。雖然冰凍切片大大快於石蠟切片，但所顯示的形態結構卻不如前者，因此病理醫生最後還需要根據石蠟切片作出准確診斷。近些年來，在病理常規製片過程中採用了微波技術，從而大大縮短了製片過程，而且對形態結構並沒有影響。微波是一種波長很短、頻率卻很高的高頻電磁波〔波長為1米 ～1毫米，頻率為300兆赫（MHz）～300千兆赫（GHz）〕。組織經微波輻射後加速組織內部分子的高速運動，以使液體的運輸加快，增加彌散、滲透和交換效率，從而加速組織的固定、脫水、透明、包埋和染色各個環節。例如常規福爾馬林固定需數小時～1天，而且能引起組織收縮及某些抗原成分不同程度的受到破壞，微波固定僅需1～2分鍾，且可減少抗原的丟失和損害。選擇適當的檔次（功率）、輻射時間和溫度是極為重要的。目前微波技術的應用在國內尚處於起步階段，許多技術應用環節尚需進一步摸索。

兩種東西就不是一回事,還有這不是這里的問題,看清楚了