Ⅰ 求鏈黴素詳細生產工藝流程
鏈黴素(Streptomycin)是1944年從灰色鏈黴菌(Streptomyces,griseus)培養液中分離出來的一種鹼性抗生素,我國於1958年以來大量生產,目前已形成了相當大的生產規模與能力。
傳統工藝
鏈黴素早期的提取方法採用活性炭吸附法、帶溶法、沉澱法、離子交換法。目前國內外多採用離子交換法提取鏈黴素,其工藝流程如Fig.1.7.
Fig.1.7鏈黴素傳統工藝流程
然而鏈黴素發酵液中絕大部分是菌絲體和未用完的培養基,以及各種各樣的代謝產物,如:蛋白質、多肽、色素和Ca2+、Mg2+離子等等,鏈黴素濃度遠較各種雜質的低,僅為5000單位/毫升左右。大量蛋白、多肽和高價離子(Ca2+、Mg2+)的存在對離子交換吸附影響很大。在離子交換處理前,一般採用蒸汽加熱(70~75℃)方法使蛋白質凝固變性。添加磷酸或一些絡合劑如三聚磷酸等使高價離子草酸、磷酸生成不溶性沉澱物,然後通過板框過濾或離心分離將這些沉澱物除去。這一預處理將導致10%以上的鏈黴素所添加的草酸、磷酸或絡合劑,既增加了鏈黴素提煉成本,又會降低產品純度、污染環境。同時所得的發酵濾液中仍存在許多蛋白、多肽和其它各種雜質,將會減少樹脂的吸附容量或污染樹脂,造成樹脂的沉降和堵塞,進而縮短樹脂的壽命,增加 抗生素提煉的成本。
此外採用離子交換法提煉鏈黴素,總收率不高,只達72%。同時需大量解吸液。解吸液中鏈黴素濃度低,各種雜質如色素、金屬離子等含量較高,造成下游工藝處理困難 ,產品純度不高。
三達新工藝
膜法工藝取代鏈黴素生產中的薄膜蒸發工藝,使這一問題得到了很好的解決。膜分離是一種無相變的純物理手段,能在任何膜能承受的溫度下對料液進行分子水平的分離。清潔,環保,佔地少,另外它的一大優勢是運行成本低,去除一噸水的成本比普通的三效蒸發器低,有效地控制產品,提高了產品的質量。
Ultra-flo 超濾技術替代傳統的板框壓濾/鼓式真空過濾方法。其最大的特點是在不需要加入助濾劑、絮凝沉澱劑及其他任何化學試劑的情況下,不僅可把菌絲體及其他固體雜質完全分離,而且可以把99%以上的蛋白(包括溶解性的蛋白) 與菌絲體一起剔除。
Ultra-flo 超濾技術實質是把傳統工藝中剔除蛋白(絮凝沉澱)、菌絲分離(板框壓濾/鼓式真空過濾),去除乳化(破乳劑的使用)等多種傳統的提煉與純化工藝用Ultra-flo 超濾技術加以替代,既減少了設備的投資,及原輔材料(如助濾劑、絮凝劑、破乳劑等) 的消耗,還大大提高了鏈黴素預處理的收率,使得傳統意義上板框壓濾/鼓式真空過濾工藝中10~15%的鏈黴素損失下降到1%的水平。
Ultra-flo 超濾組件適於處理高粘度的流體並達到較高的濃縮倍數,使含菌絲/蛋白及其他大分子物質的濃縮液呈漿糊狀,其固體充填密度可達到95%以上。且幾乎不含任何鏈黴素組分,從而使鏈黴素預處理的收率達到99%的水平。而且濃縮液中的菌絲/蛋白由於未受助濾及絮凝劑的污染而可直接用作動物飼料,既增加了收入,又減少了污物處置的費用,因此,受到環保當局的特別推崇。
經Ultra-flo 超濾技術處理的發酵濾液,清轍透明,不含蛋白,可用專利性的Nano -flo 納濾技術進一步濃縮到所需的濃度。Nano-flo 納濾技術與傳統意義上的反滲透 技術亦有很大區別。它既可以使鏈黴素完全截流,又允許無機鹽透析,減少滲透壓,從而有利於濃縮過程的進行,並使鏈黴素濃度達到相當高的水平,進而減少了後續工藝中有機溶媒的用量,在節省成本、增加收率的同時,減少了產品在母液及其他廢液中的損失,有利環境保護。
網站在這里咯http://blog.sina.com.cn/s/blog_5b9d1b700100dm8u.html
Ⅱ 世韓納濾膜可以應用在制葯水處理行業嗎
制葯用水通常可分為:飲用水、純化水、注射用水。
水質標准:
電阻率:版≥0.5MΩ.CM,電導率:≤2μS
氨≤權0.3μg/ml
硝酸鹽≤0.06μg/ml
重金屬≤0.5μg/ml
因為對水質要求高一般都是選擇使用海德能/陶氏進口低壓、超低壓卷式反滲透膜,它不僅可去除水中的帶電離子、無機物、膠硅,還可以去除水中幾乎全部有機物,無機物和熱源等,進口不銹鋼高壓泵可使反滲透進水壓力穩定,工作周期更長。
Ⅲ 誰能介紹一下替考拉寧的提取方面的知識,麻煩知道的介紹一下
1.溶劑萃取法
鑒於T—A2易溶於水、丙酮水溶液,在甲醇、乙醇等有機溶劑中能溶解的特性_9 J,可採用溶劑萃取法從發酵液中提取T—A2。Bardone[ J等曾首次採用非水溶性有機溶劑如氯化的C1一C4碳氫化合物或C4一C6鏈烷醇萃取T—A2。發酵液先過濾,濾液用l0%的鹽酸(加少量氯化鈉)調pH至3.5後用丁醇萃取,再經
高速離心、濃縮、冷卻沉澱得粗品。其菌絲先水洗,用10%的鹽酸調pH為3.5,再用丙酮水溶液(8:2)提取,蒸去丙酮,維持pI-I3.5不變。再經丁醇萃取,離心、濃縮、冷卻沉澱出粗品。合並粗品,經HPLC及微生物檢定法檢測純度為64.8%。另有專利報道了稍加改進的提取方法。即用水溶性有機溶劑如丙酮、乙腈、正丙醇、甲基乙基酮、二甲亞碸等直接加入到酸化的發酵液中(pH=3~4),聚集T—A2,經離心或過濾除去菌絲體,其溶液部分再經濃縮、冷卻,沉澱出T—A2粗品。收率達64.5% ~88.7%。該法與上述兩步法相比,操作簡單,且提高了收率。
2 吸附法
T—A』抑菌的作用原理是它與細胞壁粘肽合成的前體UDP—N一乙醯胞壁醯一L一丙氨醯一 一D一谷氨醯一L一賴氨醯一D一丙氨醯一D一丙氨酸(UDP一五肽)末端,即D—Ala—D—Ala的游離羧基緊密結合,形成T—A2和N、N 一二乙醯基一L一賴氨醯一。
一丙氨醯一D一丙氨酸的復合物,干擾了細胞壁的正常合成,從而抑制了細菌的生長。而且實驗證明T—A2對以D—Ala—D—A1a為末端的肽有高度的親和性(Ka=1.5×106)⋯J。根據這一作用機制,通過將二肽D—Ala—D—Ala或多肽X—D—Ala—D—Ala(×為氨基酸殘基)連接於載體上製成有生物選擇性的親和介質,能有效地進行分離純化T—A2。其親和載體可採用瓊脂、葡聚糖、纖維素、聚苯乙烯或丙烯酸系共聚物等大分子物質,通過交聯反應,與D~Ala~D—Ala或X—D—Ala—D—Ala相連形成親和介質。也可將帶有「手臂」(如6一氨基己酸,N一羥基琥珀醯亞胺或脂肪酸鏈)的載體與上述肽段相連形成親和介質,直接
將發酵液裝入有此類親和介質的層析柱。實驗表明此法能有效地分離純化糖肽類抗生素,尤其是T—A2及T一 的衍生物Corti等曾運用Sepharos 4B— D—Ala—D—Ala直接由發酵液純化得到T一 。上柱後經鹼性緩沖液解吸,可以得到純度約94% 的T
— A,,收率達65% 。並且此親和介質也已被成功用於尿和血漿中T—A2的濃縮和純化。Folena—Wasser—man等運用Afi—Gel 10一D—A】a—D—Ala純化T一 ,也取得了好的效果。
解吸液可採用鹼性緩沖液如pH9.5 0.4mol/LNaHco3(含乙腈)、pH9 0.25mol/L NaHC~) (含乙腈)、pHll 0.1mol/L.氨水(50% 乙腈),或pHIl0.15mol/L NaCI磷酸緩沖溶液。實驗證明pH在10~ l1.5范圍內的解吸劑效果較好,其解吸率可達97%以上。由於發酵液中雜質多,如直接上柱,久之必然污染色譜柱,因此上柱前可將發酵液先經過初步分離,如過濾、萃取、沉澱等過程,不僅會增加色譜柱的使用壽命也會提高其吸附效果。利用分子吸附原理採用聚醯胺樹脂也已被證明能很好地分離純化T—A2。發酵液經初步純化後調至pH5 8,上聚醯胺(CC一6、SC一6、cc6Ac、sc6Ac)樹脂柱,用甲醇水溶液(9:1)洗脫,洗脫液蒸去甲醇,加入丙酮,降溫沉澱出T—A2或在低溫下(5℃)調pH至等電點沉澱出該物質,純度為85.7%。另外在發酵液初步純化時,如果在pH 10.5~11的情況下分離菌絲體,至少90%的產品進入濾液,因此僅此一步就能使替考拉
寧純化過程總收率提高50%。
3 離子交換法
從T一 的化學結構看:它有一個氨基和一個羧基,屬兩性化合物。因此可用離子交換樹脂提取。最早採用陽離子交換樹脂(IR120或Dowex50)作純化載體。後有專利報道,採用聚苯乙烯二乙烯苯磺酸鈉DOW [XFS一43278.002]強酸鈉鹽樹脂純化T—A2。將樹脂放入發酵液中,室溫下攪拌6h,水洗飽和後的樹脂,再把樹脂放入pill0.5的氫氧化鈉溶液中,維持pH不變,攪拌2h,濾除樹脂,再經脫鹽、濃縮可製得T— A2成品。因為使用酸性離子交換樹脂會增加T—A2糖基部分的降解,強鹼性離子交換樹脂卻易增加T—A2的差向異構化,且離子交換樹脂因選擇性較差也不能有效地用於純化T—A2,因此該法的應用前景不被看好,見諸報道者寥寥。
4 液相色譜法
液相色譜法是一種分離和鑒定化合物的有效方法。它能高效分離純化很復雜的混合物。Borghij等曾利用反相高效液相色譜把由紙色譜和薄層色譜法得到的T—A2成功分離,得到T—A2一l~T—A2—5五個單一組分。其過程如下:將溶劑萃取法或其它方法得到的T—A2溶解在0.2% 甲酸銨一乙腈(9:1)中,用
lmol/L NaOH調pH7.5,通入制備HPLC柱(硅烷化的硅膠柱),用10%~20%乙腈和0.2%甲酸銨混合溶液線性梯度洗脫,分步收集,經HPLC分析鑒定,合並其HPLC分布相似的溶液,減壓濃縮除去有機溶劑。濃縮液再上制備HPLC,用50%乙腈洗脫,濃縮洗脫液後,加入丙酮一乙醚(1:1)可沉澱出T—A2一l和T—
A'2。T~A2 、T—A2 4和T—A2 可通過半制備HPLC(Whatman Partisil ODS M一9),用0.2%甲酸銨一乙腈(76:24)解吸,再經脫鹽,沉澱可得單一組分。Cometti等也曾利用低壓制備液相色譜(Jobin—Yron柱)純化T—A2(流動相CI43CN/NaI-'I2PO4(27/23))。張麗華等採用模擬移動床色譜技術對替考拉寧的提純條件進行了研究,取得了良好的效果。但目前該法還處於實驗室階段。另外,據韓國資料報道,目前韓國正是採用溶劑法和HPLC相結合的方法純化T—A2,其收率約65%。
參考文獻---替考拉寧提煉工藝的研究進展--王增霞 吳明 蔣寧
Ⅳ 發酵液提取工藝有哪些,比較常用的
●溶媒萃取法在目前的微生物葯物尤其抗生素生產中的應用較為普遍,特點是產品純
度、顏色等質量特徵較好,盡管離子交換技術已比較發達,但還不能完全替代溶媒萃取法。
需要注意的是一定要關注溶劑的安全性,
選用毒性低的溶劑如常用乙酸乙酯、
乙酸丁酯和丁
醇等,
用到的溶劑要在質量標准中進行殘留量的嚴格控制,
一般不選用
1
類和
2
類溶劑;
另
外,
所用溶劑對目標物應具有較好的溶解性和選擇性,
少量即可提取完全,
並使目標物和雜
質良好分離。
乳化現象是溶媒萃取法中需要克服障礙,
如使用去乳化劑,
應考慮其安全性以
及從終產品中的殘留情況,必要時檢測其殘留量。
●離子交換法因成本低、
設備簡單、
不用或少用有機溶劑等優點,
已成為提取抗生素的
重要方法之一,
如許多氨基糖苷類抗生素和多粘菌素等多用此法提取。
但有時產品質量特徵
稍不如意,另外,此種提取過程中
pH
變化較大,不適於穩定性較差目標物如青黴素等的提
取。解吸附時常用水、稀酸、鹽或其他絡合劑等,一般說來,酸性吸附鹼性洗脫,鹼性吸附
酸性洗脫,為防止洗脫過程
pH
變化過大,避免影響目標物穩定性,可選用緩沖液洗脫劑,
有時還會用到含有機溶劑的洗脫劑以提高洗脫效果,需要考慮的是洗脫劑對目標物的影響、
洗脫劑的安全性及其在終產品中的殘留情況,如
NH4+
和鏈黴素反應會生成毒性很大的二鏈
霉胺,故吸附鏈黴素後的飽和樹脂不可使用氨水洗脫。
●吸附法在早期的微生物葯物如青黴素、林可黴素以及維生素
B12
等的提取中應用較多
,
吸附劑為活性炭、
酸性白土以及弱酸性離子交換樹脂等,
按原理可分為物理吸附、
化學吸附
和交換吸附等類型。
因選擇性差、收率不高等缺點,在後來的生產中漸被其它方法取代,但
近期隨著大孔網狀聚合物吸附劑的合成和發展,
重又得到重視和應用。
使用時需要關注溶液
pH
對目標物穩定性的影響以及解吸附劑的安全性及其在終產品中的殘留情況。
●沉澱法提取目標物在國內應用較為廣泛,
尤其在四環類抗生素的生產中應用較多,
一
般可分為間接沉澱和直接沉澱兩種類型。
如用到沉澱劑,
需要考慮其安全性、
對目標物穩定
性的影響以及在終產品中的殘留情況。
另外,
沉澱法得到的產品一般顆粒粗大,
必要時要經
過粉碎、重新溶解結晶等措施,控制產品一定的粒度,保證臨床有效性。
希望對你有幫助
望採納
Ⅳ 從發酵液中提取酶的原理
摘要 利用微生物發酵技術生產的生物酶,都可以通過工業化技術進行分離、提取、純化,從而得到商品酶制劑。如果是胞外酶,一般是先對發酵液進行過濾,濾液中的酶可根據其等電點調整PH值使其沉澱。還有其他沉澱方法,如鹽析法、有機溶劑沉澱法、單寧沉澱法等。離心後得到粗提的酶,再溶解後,可重復上述步驟,使酶的純度進一步提高。如果需要精製酶,還可通過層析、電泳、萃取等方法,對酶進行進一步提純。有時,還要根據需要,進行脫鹽、脫色處理。
Ⅵ 發酵液預處理為什麼要用草酸酸化
發酵液的預處理
1 加水稀釋法和加熱法
加水稀釋法能降低液體粘度,但會增加懸浮液的體積,加大後繼過程的處理任務。而且,單從過濾操作看,稀釋後過濾速率提高的百分比必須大於加水比才能認為有效,即若加水一倍,則稀釋後液體的粘度必須下降50%以上才能有效提高過濾速率。
加熱是發酵液預處理最簡單最常用的方法。加熱可有效降低液體粘度,提高過濾速率。同時,在適當溫度和受熱時間下可使蛋白質凝聚,形成較大顆粒的凝聚物,進一步改善了發酵液的過濾特性。
對於粘度較高的發酵液,稀釋或者加熱可以降低發酵液黏度,有利於輸送和過濾等後續操作。
2 離心法
國內在這方面的報道,主要反映了高速離心能耗大、設備昂貴,因而得不到推廣應用。國內有些廠家仿效國外的做法, 採用高速蝶片式噴嘴離心機分離菌體, 雖對谷氨酸菌體的除去有一定效果, 但對菌絲較輕細的肌苷菌體至今未取得滿意的結果且設備價格昂貴。
3 絮凝和凝聚及混凝方法
絮凝預處理能顯著加快發酵液中固體顆粒的沉降,提高過濾速度。李凡鋒等處理1,3-丙二醇發酵液後,其中絮凝樣的濾餅濕基、干基重量分別比對照樣增加了41.13%、51.88%。
江龍法等採用殼聚糖作為絮凝劑對L - 乳酸發酵液進行預處理,取得了較好的結果。
江龍法等用殼聚糖作絮凝劑處理谷氨酸發酵液,經處理後的發酵液菌體減少95 %以上,谷氨酸濃度沒有降低。
周榮清等的研究證明:透明質酸發酵液經絮凝預處理後,不僅可以大大改善發酵液的固液分離效果,同時其濾清液的純度亦有一定幅度的提高,在超濾過程中污染程度明顯減少,滲透通量增加。
4 調節PH值
調節pH值可以改善發酵液吸附性質和使蛋白變性。對於加入離子型絮凝劑的發酵液,調節pH可改變絮凝劑的電離度,從而改變分子鏈的伸展狀態。郝健等[7]的研究表明,pH越低,相同操作電壓下工作電流越大,脫鹽操作時間也越短,發酵液初始pH 調至6 左右為宜。
李向平等以殼聚糖為絮凝劑進行了單因素絮凝實驗,結果表明pH值和絮凝劑用量對絮凝效果影響很大。
5 加入助濾劑
助濾劑是一種不可壓縮的多孔微粒,它能使濾餅疏鬆,吸附膠體,擴大過濾面積,濾速增大。助濾劑的添加可以改善發酵液過濾性質。助濾劑作為膠體粒子的載體,均勻地分布於濾餅層中,相應地改變了濾餅結構,降低了濾餅的可壓縮性,也就減小了過濾阻力。
王曉靜等針對絮凝預處理後過濾速率慢的問題,採用添加助濾劑的方法。以粗、細2種粒度的硅藻土進行摻漿法實驗,即把助濾劑直接投到懸浮液中,目的是增大濾餅的孔隙,使液相能夠快速流出。
6 加入反應劑
改善過濾性能較好的方法是加入一些反應劑,它們能相互作用,或和某些溶解性鹽類發生反應生成不溶解的沉澱。生成的沉澱能防止菌絲體粘結,使菌絲具有塊狀結構,沉澱本身即可作為助濾劑,並且還能使膠狀物和懸浮物凝固。
例如發酵液中有不溶解的多糖存在,則最好用酶將它轉化為單糖,以提高過濾速度。加入澱粉酶後,能使過濾速度加快。
在發酵液中加入某些鹽類,可除去高價無機離子。如除去鈣離子,可加入草酸鈉,生成的草酸鈣能促進蛋白質凝固,提高溶液質量。除去鎂離子,可加入三聚磷酸鈉Na5P3O10,它與鎂離子形成不溶性絡合物。用磷酸鹽處理,也能大大降低鈣離子和鎂離子的濃度。除去鐵離子,可加入黃血鹽,使其形成普魯士藍沉澱。
7 膜處理
膜分離技術是近三十多年來發展起來的高新技術,具有高效、節能、過程簡單、容易操作和控制、不污染環境等優點。由於這些優點、使膜分離技術在短短的時間迅速發展起來,已廣泛有效地應用於石油化工、生化制葯、醫療衛生、冶金、電子、能源、輕工、紡織、食品、環保、航天、海運、人民生活等領域,形成了獨立的新興技術產業。
張月萍等用超濾膜對VB12發酵濾液進行分離,使純度提高50. 3%,收率提高12. 5%。馮建立等採用自製的超濾膜對紅黴素發酵液去乳化進行研究, 解決了絮凝法去除蛋白和多糖效果較差的問題, 同時提高了萃取的收率和質量。
以上這些方法各有特點,通常是幾種方法綜合使用,以提高發酵液預處理效率。馮聞錚等考察了溫度、酸度、絮凝劑和凝聚劑等對過濾速度和濾液效價的影響。實驗發現過濾液效價隨過濾溫度和pH 值不同而變化,實驗還發現,不同絮凝劑影響濾液效價, 以聚丙烯醯胺為最好, 外加溶劑也影響濾液效價, 乙醇使效價降低, 而丙酮和甲醛可使效價升高。
Ⅶ 鏈黴素的生產過程
分為兩大步驟:①菌種發酵,將冷干管或沙土管保存的鏈黴菌孢子接種到斜面培養基上,於27℃下培養7天。待斜面長滿孢子後,製成懸浮液接入裝有培養基的搖瓶中,於27℃下培養45~48小時待菌絲生長旺盛後,取若干個搖瓶,合並其中的培養液將其接種於種子罐內已滅菌的培養基中,通入無菌空氣攪拌,在罐溫27℃下培養62~63小時,然後接入發酵罐內已滅菌的培養基中,通入無菌空氣,攪拌培養,在罐溫為27℃下,發酵約7~8天。②提取精製,發酵液經酸化、過濾,除去菌絲及固體物,然後中和,通過弱酸型陽離子交換樹脂進行離子交換,再用稀硫酸洗脫,收集高濃度洗脫液──鏈黴素硫酸鹽溶液。洗脫液再經磺酸型離子交換樹脂脫鹽,此時溶液呈酸性,用陰離子樹脂中和後,再經活性炭脫色得到精製液(見彩圖)。精製液經薄膜濃縮成濃縮液,再經噴霧乾燥得到無菌粉狀產品,或者將濃縮液直接做成水針劑。
Ⅷ 發酵液分離純化的一般工藝流程
粗提取——
硫酸銨分級沉澱——
透析脫鹽——
乙醇分級沉澱——
離子交換層析
Ⅸ 鹽漬牛肝菌食用時怎麼脫鹽
摘要 1、清除掉泥腳和雜質新鮮採摘的牛肝菌會混有雜菌、雜物,在清洗之前要先把菌柄底部帶有沙土的泥腳去掉,另外菌柄周圍的樹葉等雜質先清除干凈。
Ⅹ 生產的發酵液如何鑒定其中的主要成分
我想你要從以下的幾個方面來考慮:
1)初步確定你的發酵液中的活性成份的性質,HPLC顯示都是極性非常強只是說明它的水溶性很好,不足以判斷它的性質;你可以查閱質料,看一下相關的菌種產生的活性物質的種類,然後設計相關的實驗來進行初步驗證,比如抗生素能產生抑菌圈,蛋白酶能水解蛋白質底物形成透明圈等相關實驗;
2)根據活性成分的性質來設計分離純化的方法;
3)發酵液的預處理,首先要過濾除去菌體等發酵液中不能溶解的雜質,如果產生色素的話最後先去除色素,以免干擾後面的分離過程;同時要根據活性成分成分的性質對活性成分進行一定的濃縮處理,再根據你要用的柱子來進行必要的處理,比如透析出鹽等,同時要注意在預處理的過程中盡量保持活性成分的活性。
離心去菌體後,你可以先用各種有機溶劑如甲醇、氯仿等進行萃取,檢查萃取液與沉澱物質的活性,確定你的活性成分的大致性質;也可以先用鹽析的方法,用硫酸氨等進行鹽析,測試活性。這些工作完了以後,可以過開放柱進行初步的純化,收集活性物組分。有必要的話,上低壓色譜柱或是高壓色譜。收集活性峰,一般經過高效液相色譜後,就比較純了。
如果活性物質極性很強,那你就需要換一根可以分離極性物質的柱子,好像C18或是凝膠柱。
發酵液的預處理和固液分離
根據活性物質的許可范圍,可以採取酸化、加熱、過濾、絮凝、離心等。
提取(分離濃縮)
經常採用的方法有化學萃取、樹脂吸附、沉澱等。
精製(純化)
常採用的方法有結晶、脫色、色譜層析等。
此外在提取步驟中應用的沉澱、吸附等方法也可用於樣品的純化。
提取方法的選擇
1.產品的基本理化性能,如化學結構、化合物的溶解度、極性、pK值、官能團反映等。
2.化合物的穩定性,如耐受的pH范圍、耐受的溫度條件、光照、氧化等。
此外,在分離純化過程中值得提及的是,盡可能地避免二次污染。如分離純化過程中使用的水要求去離子,有機溶劑要求高純級,使用的樹脂應該經過預處理除去其中殘留的雜質等。
Hplc純化時可試試調節pH值,適當降低乙腈或甲醇的量
哈爾濱有這樣的機構,具體參考下面的網站