超濾膜截留分子量的選擇

Ⅰ 超濾膜能除去硬水中的鈣、鎂離子嗎

膜處理當中，一般可以分為超濾，納濾和反滲透。您所指的超濾膜，一般孔徑都在0.1-0.01um，截留的分子量做1000--30萬之間。而鈣鎂離子的直徑，分子量，都要遠遠小於該數值。因此為透過超濾膜，一般來說，超濾只能除去大蛋白，細菌等類似物質，如果您要去除鈣鎂離子，建議可以用納濾或者反滲透。

去除水中鈣鎂離子的方法：1.反滲透。2.離子交換樹脂法。

超濾能去除的：懸浮物、膠體、藻類、細菌、隱孢子蟲、賈地鞭毛蟲、病毒等

超濾不能去除的：水、可溶性鹽、離子類、殺蟲劑、溶解性有機物等

超濾膜的過濾精度是0.01微米，而鈣離子直徑為0.0004微米，鎂離子直徑為0.0005微米，超濾的孔徑要遠遠大於鈣鎂離子的直徑。如果您要去除鈣鎂離子，建議可以用納濾或者反滲透。

Ⅱ 名詞解釋:超濾膜截留分子量

超濾膜，是一種孔徑規格一致，額定孔徑范圍為0.001-0.02微米的微孔過濾膜。在膜專的一側施以適當壓力，就屬能篩出小於孔徑的溶質分子，以分離分子量大於500道爾頓(原子質量單位）、粒徑大於10納米的顆粒。

Ⅲ 截留分子量在1000-10萬的溶質，請問該選怎樣的超濾膜或怎樣搭配膜主件。

要根據溶質的大小，比如多少納米、多少道爾頓，然後選擇膜。只知道分子量是不夠的。例如蛋白質的分子量很大，但卻只有幾個納米大小啊。

Ⅳ 超濾膜的截留分子量如何測定

一般用葡聚糖標定 ，用西格瑪的標準分子量的葡聚糖

Ⅳ 超濾膜的去除大腸桿菌率是多少

大腸桿菌（Escherichia coli，E.coli） 革蘭氏陰性短桿菌，大小0.5×1～3微米。超濾膜的截版留分子量為1000~500000道爾頓或者截權留溶質尺寸大小為0.005~0.1微米左右。因此，超濾膜幾乎能截留溶液中所有的細菌、病毒及膠體微粒、蛋白質、大分子有機物。

Ⅵ 超濾截留的粒徑范圍

超濾膜一般從10-200nm孔隙不等，越小適合截留真溶液中的大分子量無機鹽，越大適合截留水溶液和有機溶劑中的雜份固形物。超濾截留分子越小，壓力越大。

Ⅶ 已有超濾膜PES，想知道它的截留分子量是多少，有沒有一種方法測它的截留分子量，具體測試步驟是什麼

1、兩種測試方法，一種用純水通量來測試，這種測試呢是經驗值，但也不會錯的離譜
另外一種是評價液來評價，可能要花錢。也可以兩者結合來檢測分子量。因為您只有膜。如果選擇評價液，也不知道選擇多少分子量的評價液合適。。。

2、建議方法，先用純水通量對嗎進行檢測。。。純水通量在 300L/㎡.H 大概是 10萬分子量的
純水通量在 120L/㎡.H 大概是 6000分子量的膜
如果要得到精準的分子量，根據您測的純水通量。在用相對應的評價液，來進行過濾測試。。。
部知道您是否明白，也部知道是否能幫助到您，如果您還有不明白的可以在問我.有可能有很多錯別字，請保函
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Ⅷ 超濾膜上的截留率怎麼選擇

要求大於99%。高質量的超濾膜孔密度很大，截留率要求大於99%，孔徑分布顫族很窄。純水透過率越大越好。超濾膜，是耐世一種孔徑規格一致，額定孔徑范圍為0.01微米以茄畝弊下的微孔過濾膜。性能用純水透水率、截留分子量和截留百分率表示。

Ⅸ 蛋白分子量為45KD應選用截留分子量30kd的超濾管合適嗎

3KD指的是截留分子量截留分子量（MWCO:molecularweightcutoff）是使用分子量大小表示的超濾膜的截留性能，專又稱作切割分子量。由屬於直接測定超濾膜的孔徑相當困難，所以使用已知分子量的球狀物質進行測定。如膜對被截留物質的截留率大於90%時，就用被截留物質的分子量表示膜的截留性能，稱為膜的截留分子量。實際上，所使用的物質並非絕對的球形，由於試驗條件的限制，所測定的截留率也有一定的誤差，所以截留分子量不能絕對表示膜的分離性能。也就是說3KD分子量的產品有可能透過膜也有可能被膜攔截，一般來說希望3KD的產品全部透過，需要選擇截留分子量更大的膜，比如5KD

Ⅹ 超濾離心管怎麼使用

蛋白濃縮和換Buffer通常使用的超濾管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超濾管（MWCO10kD）。也有其它型號的、不同體積大小和超濾管可選，視目的蛋白的分子量與濃縮前體積、濃縮目標體積而定。可重復使用。
1、選擇合適的超濾管，主要考慮MWCO和濃縮體積，通常應截留分子量不應大於目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的超濾管。若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。
2、新買來的超濾是乾燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全過膜，冰浴或冰箱里預冷幾分鍾。然後將水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超過管頂的白線為准。操作要輕，加入蛋白液前，超濾管需要插在冰上預冷。
3、平衡。質量和重心二者都要達到平衡。注意轉速和加速度不可太快，否則直接損壞超濾膜。開始離心超濾（離心機預冷至4度）。膜與轉軸的方向根據說明書調整（角轉離心機的情況是膜與軸垂直）。在實際使用中，一般轉速開的比說明書里的要低，這樣可以延長離心管的使用壽命。
4、當濃縮到剩下1ml時，【取50ul國產Bradford溶液，加入10ul流穿，看有沒變藍色，以此判斷超濾管是否漏掉蛋白。如果管漏了，將上層和流穿重新倒入新管中開始超濾。要精確判斷是否漏管，用5mg/ml的BSA離心10min，再取流穿，跑蛋白膠或Bradford粗測】，繼續加入剩下的蛋白液濃縮（在冰上操作，防止蛋白受熱），直到所有濃縮液都加完為止。離心過程中注意是否發生蛋白沉澱，導致堵管。若發生沉澱，要確定沉澱的具體原因，是蛋白濃度過高還是Buffer不合適；前者可用多根超濾管同時超濾，降低濃度的辦法解決，後者的方法是換不同的Buffer，直到蛋白不發生沉澱為止。
5、前面幾步用以濃縮蛋白，如果要換Buffer，在總蛋白液濃縮至1ml左右的時候，輕輕加入新的Buffer（經0.22um超濾膜超濾），再濃縮至1ml左右，連續三次，最後一次的濃縮終體積根據需要的蛋白濃度而定，一般不多於500ul，也有濃縮至200ul以內的情況。按照每次至少10倍左右的體積濃縮算，三次達到1000倍以上，基本上可以達到換buffer的目的。
6、取出最終蛋白濃縮液的操作在冰上操作，用黃槍頭（200ul）取，輕輕順著邊緣插入槍頭，輕輕吹打、混勻蛋白液，注意不要碰到超濾膜，然後吸取濃縮液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最後一點濃縮液不必吸取，否則難度太大，有可能損壞超濾膜。最後加入MilliQ水到超濾管中，沒過超濾膜，防止膜失水變干。
7、以下是處理超濾管，重復利用超濾管的步驟。
8、倒出超濾管里的水，用milliQ水輕輕潤洗幾次，【若管底有可見的蛋白沉澱，可以先加入水，然後用槍頭吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉澱懸起，然後倒掉，不可用自來水猛沖】然後加入0.2M的NaOH溶液，室溫放置20min，期間平衡超濾管。再離心10min。倒出殘留的NaOH溶液，將管芯浸入MilliQ水的燒杯(1或2L)中,放置幾個小時,再換新的水,放置幾個小時，不斷稀釋NaOH濃度。50ml管和蓋子用自來水洗，內壁再用MilliQ水洗干凈。
9、取出浸沒的管芯，加至接近滿的MilliQ水，50ml管也加滿MilliQ水，將管芯慢慢放入50ml
離心管，排出部分水，然後蓋上蓋子，放4度保存，直到下次使用。一般來說，按照上述步驟和注意事項，每根管用三四年不會壞。