『壹』 在純化蛋白時，如何重復使用柱子及柱料
那就是ni-NTA的填料，幾大廠家的nta填料都是比較耐鹼的，在上輪實驗後，可以先用純水過5-10個柱體積，再用0.5N的NaOH過5個柱體積（15min-30min時間），再過至少10個柱體積的純水（確保NaOH清除干凈，可用ph試紙查ph至中性），如果短時間不用，就用20%無水乙醇保柱。
如果是多次使用後發現蛋白掛不上，或填料發白，就說明填料上ni脫落的厲害，需要重生，這就要看你填料的說明書要求，但一般過程是差不多的，你寫下，你參考：
（1）過5體積純水平衡柱子；
（2）過5體積NaOH（0.5N），15-30min時間；
（3）純水10體積；
（4）依次10%、20%、50%、70%、90%無水乙醇3體積；
（5）100%無水乙醇5體積；
（6）依次90%、70%、50%、20%、10%無水乙醇3體積；
（7）純水10體積
（8）EDTA2Na(50nM)，這是脫ni，要洗至填料變白；
（9）純水20體積；
（10）100mM的NiSO4（硫酸鎳），5體積（流速要慢，可多過幾個體積），重新上ni；
（11）純水10體積；
這就重新掛ni了，填料應該重現微藍色，可再使用。但就我的經驗，一般填料重生3次以上後，其效果就不樂觀了，現在ni-nta也不貴，如果實驗比較重要，建議使用新填料。
若有疑問，歡迎繼續討論，純屬手打，歡迎採納，祝實驗順利！
『貳』 分離提純蛋白質時常需去鹽,常用去鹽的方法有哪些
蛋白質沉澱的定義： 蛋白質分子凝聚從溶液中析出的現象稱為蛋白質沉澱(precipitation)，變性蛋白質一般易於沉澱，但也可不變性而使蛋白質沉澱，在一定條件下，變性的蛋白質也可不發生沉澱。 蛋白質沉澱的方法： 鹽析法 ——多用於各種蛋白質和酶的分離純化； 在蛋白質溶液中加入大量的中性鹽以破壞蛋白質的膠體穩定性而使其析出，這種方法稱為鹽析。常用的中性鹽有硫酸銨、硫酸鈉、氯化鈉等。各種蛋白質鹽析時所需的鹽濃度及pH不同，故可用於對混和蛋白質組分的分離。例如用半飽和的硫酸銨來沉澱出血清中的球蛋白，飽和硫酸銨可以使血清中的白蛋白、球蛋白都沉澱出來，鹽析沉澱的蛋白質，經透析除鹽，仍保證蛋白質的活性。調節蛋白質溶液的pH至等電點後，再用鹽析法則蛋白質沉澱的效果更好。鹽析法分為兩類，第一類叫Ks分段鹽析法，在一定PH和溫度下通過改變離子強度實現，用於早期的粗提液；第二種叫b分段鹽析法，在一定離子強度下通過改變PH和溫度來實現，用於後期進一步分離純化和結晶。影響鹽析的因素包括：蛋白質濃度、離子強度和類型、PH值、溫度等。針對溫度這一條，需要強調：在低離子強度或純水中，蛋白質溶解度在一定范圍內隨溫度增加而增加。但在高濃度下，蛋白質、酶和多肽類物質的溶解度隨溫度上升而下降。在一般情況下，蛋白質對鹽析溫度無特殊要求，可在室溫下進行，只有某些對溫度比較敏感的酶要求在0-四℃進行。 使用硫酸銨沉澱蛋白需要注意：硫酸銨中常含有少量的重金屬離子，對蛋白質巰基有敏感作用，使用前必須用H二S處理：將硫酸銨配成濃溶液，通入H二S飽和，放置過夜，用濾紙除去重金屬離子，濃縮結晶，一00℃烘乾後使用。另外，高濃度的硫酸銨溶液一般呈酸性（PH=5.0左右），使用前也需要用氨水或硫酸調節至所需PH。 有機溶劑沉澱法 ——多用於生物小分子、多糖及核酸產品的分離純化； 有機溶劑的沉澱機理是降低水的介電常數，導致具有表面水層的生物大分子脫水，相互聚集，最後析出。該法優點在於：一）分辨能力比鹽析法高，即蛋白質或其它溶劑只在一個比較窄的有機溶劑濃度下沉澱；二）沉澱不用脫鹽，過濾較為容易；三）在生化制備中應用比鹽析法廣泛。但是，在常溫下，有機溶劑沉澱蛋白質往往引起變性。例如酒精消毒滅菌就是如此。因此，操作要求在低溫下進行。有機溶劑的選擇首先是能和水混溶，使用較多的有機溶劑是乙醇、甲醇、丙酮，還有二甲基甲醯胺、二甲基亞碸、乙腈和二-甲基-二,四戊二醇等。 等電點沉澱法 ——此法單獨應用較少，多與其它方法結合使用； 兩性電解質分子上的凈電荷為零時溶解度最低，不同的兩性電解質具有不同的等電點，以此為基礎可進行分離。如工業上生產胰島素時，在粗提液中先調PH吧.0去除鹼性蛋白質，再調PH三.0去除酸性蛋白質。利用等電點除雜蛋白時必須了解制備物對酸鹼的穩定性，不然盲目使用十分危險。不少蛋白質與金屬離子結合後，等電點會發生偏移，故溶液中含有金屬離子時，必須注意調整PH值。等電點法常與鹽析法、有機溶劑沉澱法或其他沉澱方法聯合使用，以提高其沉澱能力。 重金屬鹽沉澱法 ——常用於搶救誤服重金屬鹽中毒的病人； 許多有機物質包括蛋白在內，在鹼性溶液中帶負電荷，能與金屬離子形成沉澱。根據有機物與它們之間的作用機制，可分為羧酸、胺及雜環等含氮化合物類，如銅鋅鎘；親羧酸疏含氮化合物類，如鈣鎂鉛；親硫氫基化合物類，如汞銀鉛。蛋白質-金屬離子復合物的重要性質是它們的溶解度對溶液的介電常數非常敏感，調整水溶液的介電常數（如加入有機溶劑），即可沉澱多種蛋白。沉澱的條件以pH稍大於等電點為宜。重金屬沉澱的蛋白質常是變性的，但若在低溫條件下，並控制重金屬離子濃度，也可用於分離制備不變性的蛋白質。臨床上利用蛋白質能與重金屬鹽結合的這種性質，搶救誤服重金屬鹽中毒的病人，給病人口服大量蛋白質，然後用催吐劑將結合的重金屬鹽嘔吐出來解毒
『叄』 純化水系統的純水可以用來配製化驗室的試劑嗎
純化水系統的純水只有達到以下實驗室用水的標准，就可以用來化驗室配試劑！
國家回實驗室用水規格GB6682-2008
名答 稱 一 級 二 級 三 級
PH值范圍（25℃） - - 5.0-7.5
電導率（25℃）,mS/m ≤ 0.01 0.10 0.50
比電阻（MΩ.cm.25℃）≥ 10 1 0.2
可氧化物質[以（0）計]，mg/L - 0.08 0.40
< 吸光度（254nm,1cm 光程）≤ 0.001 0.01 -
蒸發殘渣（105±2℃），mg/L≤ - 1.0 2.0
可容性硅[以（sio2）計]，mg/L< 0.01 0.02 -
『肆』 制葯為什麼用到純化水一個固體的物質，與液體有什麼關系
因為那些葯品在成為固體之前曾經是液體。而普通自來水中有很多雜質是沒辦法和葯品分離開的，所以必須使用純化水，否則葯品就會被污染。
具體的流程是這樣的
。
首先，這些葯品是通過發酵形成的，開始的時候是充滿發酵細菌跟原料的液體。
這些液體通過微濾膜進行過濾。除掉發酵的細菌與殘余原料，剩下純凈的，澄清的含葯品物質的溶液。
在這過程中為了盡量保留組成葯品的物質，會多次加水，進行循環過濾。--注意，這時候會加很多水，如果用自來水就會把雜質引入。
這些澄清的溶液會用超濾或離子交換系統進行有用物質的富集，而去掉大部分水。這里，如果用了自來水，那麼自來水中的很多雜質是沒辦法去除的，會和葯品中的有用物質一起富集起來，從而污染葯品。
所以制葯必須用純化水。